奥地利OROBOROS O2k植物光合呼吸研究应用解决方案
植物光合呼吸主要包括两种基本的生理活动过程:光合作用和呼吸作用。光合作用的意义在于几乎为整个生物界提供所需的物质及能量,因此,光合作用是生物界最基本的生理活动。呼吸作用的意义在于它是各种生物为自身提供生命活动所需的能量来源的一种基本的生理活动,因此,呼吸作用是生物界最普遍的生理活动。光合作用的实质是将无机物合成有机物,将光能转变为有机物中的化学能储存起来,并同时释放氧气。所以,从能量转变的过程来看,光合作用是生物界最基本的代谢。呼吸作用的实质是将生物体内现成的有机物氧化分解,并将有机物中的化学能释放出来供给自身各项生命活动利用。光合作用和呼吸作用生理实质截然相反,变化过程相对独立,生理活动密切相关,影响其生理过程的外界因素基本相同。 植物(包括大部分藻类)其体内含有两种与能量相关的细胞器,即叶绿体和线粒体;其中线粒体消耗糖类产生能量,而叶绿体在有光的条件下可将光能转化为糖类等有机物。 线粒体与叶绿体之间的生物能量关系能够维持代谢的完整性以及控制代谢物质的循环利用,此种能量串扰方式在促进植物生长发育方面发挥着重要作用。
RESEARCH SOLUTIONS OF PLANT Respiratory METABOLISM
为什么要做植物光合呼吸研究?
植物光合呼吸主要包括两种基本的生理活动过程:光合作用和呼吸作用。
光合作用的意义在于几乎为整个生物界提供所需的物质及能量,因此,光合作用是生物界最基本的生理活动。
呼吸作用的意义在于它是各种生物为自身提供生命活动所需的能量来源的一种基本的生理活动,因此,呼吸作用是生物界最普遍的生理活动。
光合作用的实质是将无机物合成有机物,将光能转变为有机物中的化学能储存起来,并同时释放氧气。所以,从能量转变的过程来看,光合作用是生物界最基本的代谢。
呼吸作用的实质是将生物体内现成的有机物氧化分解,并将有机物中的化学能释放出来供给自身各项生命活动利用。光合作用和呼吸作用生理实质截然相反;变化过程相对独立;生理活动密切相关;影响其生理过程的外界因素基本相同。
植物(包括大部分藻类)其体内含有两种与能量相关的细胞器,即叶绿体和线粒体;其中线粒体消耗糖类产生能量,而叶绿体在有光的条件下可将光能转化为糖类等有机物。
线粒体与叶绿体之间的生物能量关系能够维持代谢的完整性以及控制代谢物质的循环利用,此种能量串扰方式在促进植物生长发育方面发挥着重要作用。
植物在生长发育过程中受外界环境(如光照、温度、生物和非生物胁迫等)影响会调整自身代谢,导致植物在整体生长和结构方面有很强的可塑性,所以深入探究植物光合呼吸调控机制研究具有重要的生物学意义,将直接影响绿色植物的生长、发育等生命活动,并且可以应用于生产实践,例如作物产量的提高及农产品的贮存等。
植物光合呼吸检测技术面临的困难有哪些?
1 光合速率是指单位时间、单位叶面积吸收二氧化碳的量或放出氧气的量或有机物的消耗量。一般测定光合速率的方法都没有把叶片的呼吸作用考虑在内,所以测定的结果实际是光合作用减去呼吸作用的差数,称为表观光合速率或净光合速率。 光合速率是根据二氧化碳的吸收和氧气的释放来进行测定,目前常用红外线二氧化碳气体分析仪(光合仪)来检测二氧化碳的吸收。由于受叶室类型的限制,光合仪并不适合用于测定藻类、苔藓类、小的浮游植物、幼芽、果皮、悬浮细胞等材料的光合速率;
2 在测定呼吸作用速率时,应对能够进行光合作用的部位进行遮光处理,以便消除光合作用的影响,高质量的检测数据需要样品在绝对暗室条件下进行,对样品检测条件要求比较苛刻,目前还没有简单易行的方案可以测定植物光合呼吸的呼吸作用速率;
3 温度直接影响参与代谢相关酶的功能和活性,所以检测植物样品时,对环境温度的精度和稳定性要求较高,目前大部分植物光合呼吸检测技术对温度的精度和稳定性存在孔间差,无法满足高质量检测数据的需求;
4 植物光合呼吸研究的样本具有多样性,如植物根、种子、叶片、果皮以及真菌藻类等。 目前能对多种样本的植物器官、组织、离体培养的细胞乃至线粒体进行光合作用与呼吸作用研究中的技术还非常少。
NextGen-O2k-解决方案
※ 专用植物光合呼吸PB-Module模块:基于高分辨率呼吸测量(HRR)金标准的Oroboros O2k技术,专业用于植物光合呼吸光合速率检测的PB-Module模块,该模块集成了具有严格可控光强度的白色、蓝色或红色光源。
PB-Module模块能够在绝对密封的环境下及可控光强的情况下利用极谱氧电极传感器进行氧气消耗量的检测,用于评估O2的净光合速率和光增强暗呼吸;并且可以无限制添加不同的抑制剂,深入研究光合电子传递途径。
另外利用极谱氧电极传感器测定光合速率可以消除气孔限制对光合的影响,为科研提供有力的数据支持。
※ 全暗室环境:在测定植物样品呼吸作用速率时,可以非常简单的对检测窗口进行完全避光处理,同时样品舱为杜兰玻璃极低活性的材质,降低背景氧干扰;
※ 高精准控温:拥有极高的温控稳定性:±0.002℃,温控范围:4-47℃,可进行低温实验;
※ 多样本检测:测量样本容量是0.5ml-3.5ml,能够满足对植物根、种子、叶片、果皮、真菌藻类等植物器官、组织、离体培养的细胞及线粒体等类型广泛的样品,一站式进行代谢光合作用与呼吸作用分析;
※ 无限制加药:通过无限制添加不同的底物和抑制剂,一次性快速进行线粒体呼吸链与氧化磷酸化途径中复合物I、复合物II、复合物IV、最大呼吸率、ATP合酶的功能活性检测。
植物光合呼吸整体检测解决方案(案例)
案例一:
高分辨率光呼吸法研究光合作用和光增强暗呼吸的氧依赖性
关键词:PB-Module模块、光合作用、光增强暗呼吸
样本:藻类
参考文献:Went N,Di Marcello M,Gnaiger E(2021) Oxygen dependence of photosynthesis and light-enhanced dark respiration studied by High-Resolution PhotoRespirometry. MitoFit Preprints 2021.5.
Oroboros O2k的 PB-Module模块集成了具有严格可调光强的红光、蓝光以及全波长的白光。 PB-Module模块能够在受控的O2浓度下评估O2的净光合速率和光增强暗呼吸。 通过配置PB-Module模块,利用Oroboros O2k的高分辨率光呼吸法检测绿藻莱茵衣藻在不同氧浓度下的暗呼吸(Dark Respiration, DR)和净光合作用(Net Photosynthesis,NP)以及在明暗转换后测量光增强暗呼吸(Light-enhanced dark respiration, LEDR)。
结果:图中是两个O2k样品舱数据曲线的叠加。通过逐步增加光强度(蓝光,10到350μmol∙s-1∙m-2)将净O2产生速率(净光合作用NP)从常氧下的暗呼吸DR刺激到最大值。
光照增强暗呼吸 LEDR 是关闭灯后立即出现的呼吸尖峰。
通过间歇性打开舱室(箭头,air)来防止O2浓度达到严重的高氧状态。
从图中可以得出以下结论:
净光合作用的光抑制依赖于氧;
光增强暗呼吸不依赖氧;
光呼吸的影响小于依赖氧的光抑制。
案例二:
植物激素信号传导调控线粒体蛋白质稳态
关键词:暗呼吸检测
样本:拟南芥-叶片、线粒体
参考文献:Molecular cell | Systems Phytohormone Responses to Mitochondrial Proteotoxic Stress. 2017 Nov 2;68(3):540-551.e5.
方法:使用Oroboros O2k在24℃黑暗中测量叶片暗呼吸。
首先将来自拟南芥植物的叶盘悬浮在叶片呼吸缓冲液中,在黑暗中孵育30分钟,然后记录耗氧率。根据叶盘的鲜重归一化计算耗氧率。
使用Oroboros O2k在24℃在黑暗中对拟南芥植物叶片中分离的线粒体进行暗呼吸测定。在测量过程中,将线粒体蛋白悬浮在反应混合物中分别加入丙酮酸、谷氨酸、苹果酸、ADP和没食子酸正丙酯测量复合物I呼吸能力,然后加入琥珀酸盐测量总呼吸能力。
结果:
(A) mrpl1-1, mrpl1-3 (mitochondrial ribosomal protein L1, MRPL1) 是拟南介线粒体核糖体蛋白 L1突变体,与野生型相比,突变体叶片整体OCR显著降低;
(B)Dox是一种抑制线粒体蛋白翻译的强力霉素,野生型经Dox处理后,其线粒体整体OCR显著降低,复合物I呼吸能力也显著降低;
(C)ACC(乙烯前体)是由ACC合酶合成的非蛋白氨基酸,ACC经常被用来诱导乙烯响应,而乙烯抑制根的生长;Ag2+是乙烯作用抑制剂,分别用ACC和Ag2+处理野生型,只有通过ACC处理后的线粒体整体OCR显著升高,复合物I呼吸能力也显著升高。
结论:拟南芥MRPL1 功能突变体实验(实验A)和Dox药物处理实验(实验B)引起线粒体翻译受损,降低复合物I呼吸能力和整体呼吸能力,乙烯能够通过其信号传导调控线粒体蛋白质稳态,提高复合物I呼吸能力和整体呼吸能力。
案例三:
拟南芥根部感染根肿菌引起的缺氧反应与根肿病的发生密切相关
关键词:呼吸作用
样本:拟南芥-全根长
参考文献:BMC Plant Biology | Hypoxia response in Arabidopsis roots infected by Plasmodiophora brassicae supports the development of clubroot. (2016) 16:251.
方法:使用Oroboros O2k在7 dpi (=14 days following germination)植物根样品中评估呼吸作用;O2k检测舱装满去离子水并通过空气鼓泡使氧气饱和。 在每个实验中,根据室温和大气压校准测量值。 将根样品浸入检测舱中,同时适当搅拌培养基,用水封舱,并立即(5 分钟)监测水中氧浓度的降低。 耗氧率除以根的新鲜生物量。缺氧相关基因标志物酒精脱氢酶 1 (ADH1) 在根肿菌eH感染后诱导表达,而且ADH1启动子驱动的 GUS 表达仅限于根的最深部分,所以GUS染色的情况可以反映植物根感染后对缺氧的响应程度;如下图,分别进行7 dpi 和 21 dpi 未接种的根样品(NI)以及接种了分离株 eH植物根的GUS染色,其中7 dpi eH 根并未发生根肿,GUS染色较浅;而21 dpi 发生明显根肿,而且GUS染色很深。
结果:7 dpi 根肿感染的呼吸能力并没有显著降低,缺氧响应不明显。
结论:在植物根肿病发生发展的过程中,根的缺氧适应性响应逐渐增强。
参考文献:Molecular cell | Systems Phytohormone Responses to Mitochondrial Proteotoxic Stress
案例四:
影响拟南芥种子寿命和休眠的新参与者:AtFAHD1a ?
关键词:呼吸作用
样本:拟南芥-种子
参考文献:Molecular cell | Systems Phytohormone Responses to Mitochondrial Proteotoxic Stress
方法:使用Oroboros O2k对F2的干种子进行OCR表征。干种子直接吸入含有超纯水的检测舱里。种子OCR指示线粒体呼吸。此后,添加KCN(一种线粒体电子传递链(ETC) 的复合物IV(即细胞色素c氧化酶)抑制剂)通过抑制复合物 IV 来阻断呼吸。最后,注射没食子酸辛酯(一种线粒体替代氧化酶抑制剂),以评估这种KCN不敏感的线粒体ETC旁路对O2的消耗。在种子冻干5天后,基于干重对种子OCR数据进行归一化。
结果:(Figure A)在Atfahd1a-1种子中,O2消耗峰值的最大呼吸水平比在WT种子中高1.3倍,有显著性差异;(Figure B)添加 KCN后,复合物IV的活性在Atfahd1a-1种子中显着更高,有显著性差异。
结论:Atfahd1a-1种子在吸收开始后显示出比WT种子更快的OCR恢复。
案例五:
烟草中UCP1过表达介导线粒体生物发生并且放大了广泛的应激反应
关键词:呼吸作用
样本:烟草叶、线粒体
参考文献:BMC Plant Biology | Systems Overexpression of UCP1 in tobacco induces mitochondrial biogenesis and amplifies a broad stress response
方法:使用Oroboros O2k对WT和P07(转基因AtUCP1高表达)植物的粗分离线粒体进行线粒体呼吸的测量。首先进行粗分离线粒体,然后将含有粗线粒体的沉淀重悬于洗涤缓冲液中。苹果酸和谷氨酸被用作呼吸的底物。添加ADP以测量ADP依赖性呼吸。寡霉素用作ATP合酶抑制剂来测量由于解偶联活性引起的耗氧量,化学离子载体羰基氰化物-4-(三氟甲氧基)苯腙 (FCCP)(2μM) 用于测定最大耗氧量。
结果:WT和P07植物烟草叶中分离的粗线粒体保留了它们的呼吸特性:与基础呼吸相比,ADP和FCCP可以有效地增加耗氧量。
结论:AtUCP1过表达增加解偶联呼吸能力
短期高温处理会降低南洋杉细胞活力并抑制呼吸
关键词:呼吸作用
样本:悬浮培养的南洋杉胚胎细胞
短期高温处理会降低南洋杉细胞活力并抑制呼吸
关键词:呼吸作用
样本:悬浮培养的南洋杉胚胎细胞
案例六:
短期高温处理会降低南洋杉细胞活力并抑制呼吸
关键词:呼吸作用
样本:悬浮培养的南洋杉胚胎细胞
参考文献:Physiologia Plantarum | Short-term high temperature treatment reduces viability and inhibits respiration and DNA repair enzymes in Araucaria angustifolia cells.
方法:将细胞重新悬浮在1 ml呼吸培养基中,并均质化处理。用Oroboros O2k测定细胞呼吸,培养基中添加了苹果酸和谷氨酸、FCCP、SHAM(水杨基肟酸,AOX交替氧化酶特异抑制剂)、抗霉素 A。
结果:如图所示,细胞经过热处理后立即在 28℃下测量细胞的呼吸作用,其中:a值与对照 25℃(生长条件)显著性差异;b值与30℃ 24 h显著性差异;c值与30℃ 48 h显著性差异;d值与37℃ 6 h显著性差异,e值与42℃ 2 h 显著性差异。无论预处理如何(除了42℃ 2 小时)。添加苹果酸和谷氨酸可强烈刺激呼吸,而添加FCCP几乎没有影响。SHAM 降低了大约30%的速率,并且抗霉素完全抑制了SHAM不敏感的氧化。唯一具有显著效果的预处理是42℃ 2 小时,这将所有呼吸频率降低了> 80%。
结论:高温胁迫会降低A.angustifolia细胞的活力并抑制呼吸。
案例七:
短期UV-B暴露会导致收获的柠檬果皮发生代谢变化
关键词:呼吸作用
样本:柠檬、果皮
参考文献:Journal of Photochemistry & Photobiology, B: Biology | Short-term UV-B exposure induces metabolic and anatomical changes in peel of harvested lemons contributing in fruit protection against green mold
方法:用Oroboros O2k评估柠檬的耗氧量,将组织样本分成小块,并加入到含有缓冲液的检测舱中检测。氰化钾(KCN)用于抑制细胞色素氧化酶途径 (COX),L-1水杨基异羟肟酸(SHAM)用于抑制替代氧化酶途径(AOX)。总耗氧量相当于COX加AOX加残余呼吸。
结果:如下图所示,在指定日期测量对照(C)和UVBR处理(T)的耗氧量。(A)总呼吸测量(细胞色素呼吸(白条)+交替呼吸(黑条)+残余呼吸(条纹条)的总和);(B)细胞色素呼吸(白条)、交替呼吸(黑条)和残余呼吸(条纹条)。不同字母表示具有显著性差异。到第 7 天,来自C和T柠檬的细胞的总呼吸曲线相似(图A),此后,C柠檬的总呼吸保持低水平,而T柠檬的呼吸增加直到第30天。
结论:成熟的采后柠檬短期暴露于UV-B会诱导对辐射的适应反应。
NextGen-O2k植物光合呼吸测定系统
来自于奥地利OROBOROS 的专业用于光合作用和呼吸作用的检测系统
OROBOROS NextGen-O2k植物光合呼吸测定系统检测参数:
可同时检测 pO2(耗氧率)、
RCR(呼吸控制比率)、
pH(产酸率)、
MMP(线粒体膜电位)、
ROS(活性氧)、
ATP(三磷酸腺苷)、
Ca2+(钙离子)、
NO(一氧化氮)、
H2S(硫化氢)、
TPP+(四苯基膦)、
NADH、
质体醌、
植物氧气释放速度等。
植物的能量相关测量中NextGen-O2k拥有如下独特的优势:
1、可提供全暗环境,无需其他设备辅助;
2、可直接提供低于25℃的环境,植物相对使用的温度均在25℃以下,无需其他设备辅助;
3、植物细胞无贴壁能力,若测量只可选用悬浮测量方法,且易沉淀,需不停搅拌,常规培养时均用摇床等设备。
植物光合呼吸检测流程
1、可检测的样本:叶片、果皮、藻类、根系
2、可检测的类型:线粒体、植物组织和器官、匀浆液